黑色素瘤起源于皮肤黑色素细胞的恶性变化,具有高度转移性,但目前仍缺乏有效的治疗方法来防止其扩散。LSD1作为表观遗传修饰因子;然而,它在黑色素瘤中的作用尚未完全阐明。在本研究中,我们发现相对于原发性黑色素瘤,LSD1在转移性黑色素瘤中的表达上调。随后的实验表明,在体外和体内模型中,靶向LSD1都能有效抑制黑色素瘤的转移。从机制上讲,LSD1的药理学或遗传抑制诱导了YAP的磷酸化和随后的降解,YAP是Hippo信号通路的一个关键组成部分,与肿瘤转移密切相关。此外,ChIP-qPCR分析表明LSD1抑制增强了NF2和LATS1/2启动子区域的H3K4me2修饰,从而促进了它们的转录激活。这导致NF2和LATS1/2的表达增加,最终激活Hippo通路。这些发现不仅增强了我们对黑色素瘤转移的分子机制的理解,而且为开发LSD1抑制剂和黑色素瘤靶向治疗策略奠定了新的理论基础。本文于2026年5月发表于Cell Death and Disease(IF=12.2)上。
技术路线:

结果:
1)靶向LSD1抑制黑色素瘤细胞迁移
根据我们之前的研究,我们已经确定LSD1表达升高与肿瘤转移有关。通过分析来自TCGA的数据集,我们发现LSD1表达在转移性黑色素瘤患者的肿瘤样本中显著上调(图1A),并且LSD1 mRNA水平升高与预后不良相关(图1B)。此外,通过免疫组织化学分析黑色素瘤患者样本以评估LSD1蛋白水平,发现肿瘤转移后LSD1表达明显上调(图1C,D)。为了研究LSD1在黑色素瘤细胞中的作用,我们使用了LSD1抑制剂ORY-1001。我们采用SRB实验评估药物治疗后A375、A875和B16细胞的活力。ORY-1001对A375、B16和A875细胞的IC50值分别为31.11±5.56 μM、40.18±6.35 μM和102.80±6.10 μM(图1E)。用不同浓度的ORY-1001处理A375、A875和B16细胞,检测EMT相关蛋白的表达。结果发现,ORY-1001以浓度依赖性方式降低了N-cadherin、Vimentin、Snail和Slug蛋白的表达(图1F)。为了进一步评价ORY-1001对细胞迁移的影响,我们采用划痕法检测黑色素瘤细胞划痕损伤修复能力的变化。结果显示,与对照组相比,ORY-1001处理的细胞表现出更小的细胞划伤愈合面积和更低的迁移能力(图1G)。同样,Transwell实验证实,ORY-1001显著损害了黑色素瘤细胞的迁移能力(图1H)。与这些发现一致,在B16和A875细胞中,使用siLSD1敲除LSD1也能显著抑制EMT相关蛋白的表达并抑制迁移(图1I-K)。这些结果表明,抑制LSD1,无论是药理学上还是遗传学上,都能有效地抑制黑色素瘤细胞的转移潜力。

2)靶向LSD1通过下调YAP表达抑制黑色素瘤细胞迁移
在我们团队进行的另一项研究中,LSD1的抑制与肺癌恶性进展期间YAP的同时下调有关。因此,这促使我们研究YAP是否介导LSD1驱动的黑色素瘤转移。首先,我们评估了YAP在黑色素瘤转移中的作用。我们通过免疫组织化学分析检测了YAP在患者中的表达;结果显示,转移灶中YAP表达明显增强(图2A,B)。为了阐明YAP在黑色素瘤转移中的作用,我们在B16和A875细胞中下调YAP或异位过表达YAP (OE YAP)(图2C,D)。结果显示,YAP敲低显著降低了B16和A875细胞中N-cadherin、Vimentin、Snail和Slug的蛋白表达(图2C),而YAP过表达则具有相反的效果(图2D)。同样,与对照组相比,YAP敲低导致抓伤愈合面积变小,迁移能力减弱(图2E,F),而YAP过表达增强了细胞运动性(图2G,H)。上述结果表明,YAP的表达显著控制黑色素瘤细胞的迁移。其次,为了研究LSD1抑制剂ORY-1001是否通过YAP影响黑色素瘤转移,我们检测了其对黑色素瘤细胞中YAP蛋白表达的影响。结果显示,ORY-1001在A375、A875和B16细胞中以浓度依赖的方式增加了YAP磷酸化并降低了YAP蛋白表达(图2I)。同样,LSD1的敲低也下调了YAP的表达(图2J)。相比之下,YAP敲低和YAP过表达都没有改变LSD1的表达水平(图2K)。这些结果支持了本研究中LSD1调控YAP蛋白丰度。我们进一步研究了YAP过表达是否会抵消LSD1对黑色素瘤细胞迁移的调节作用。结果显示,YAP过表达逆转了ORY-1001对黑色素瘤细胞中EMT相关蛋白表达的抑制作用(图2D)。更有趣的是,YAP过表达完全恢复了被ORY-1001抑制的划痕伤口愈合能力和迁移能力(图2G,H)。以上结果表明LSD1通过调节YAP的表达来调节黑色素瘤细胞的迁移。

3)靶向LSD1通过激活Hippo通路降低YAP表达
qPCR分析显示,LSD1的敲低或抑制并未改变B16和A875细胞中YAP mRNA的水平(图3A,B),表明LSD1在转录水平上不调节YAP的表达。敲除LSD1可显著降低YAP蛋白的表达(图3C)。此外,MG132处理显著积累了LSD1和YAP蛋白,使用siLSD1可以减轻这种效应(图3C)。这些发现表明LSD1抑制可能促进YAP磷酸化和随后的蛋白酶体降解。为了进一步探讨LSD1对YAP核易位的影响,我们进行了核细胞质分离实验。结果表明,ORY-1001显著降低了细胞核中YAP的表达(图3D),表明ORY-1001促进了YAP的磷酸化和降解,从而限制了YAP进入细胞核。YAP主要受Hippo通路调控,是该通路下游的主要转录效应因子。接下来,我们进一步探究ORY-1001是否通过激活Hippo通路调控YAP磷酸化。结果显示,ORY-1001以浓度依赖的方式增加了LATS1、LATS2和p-LATS的蛋白水平(图3E)。通过敲低LSD1也获得了类似的结果(图3F)。此外,ORY-1001增加了p-YAP表达,同时降低了总YAP表达,这种作用被敲低LATS1/2逆转(图3G)。此外,ORY-1001显著抑制了细胞的迁移能力,这一作用通过敲低LATS1/ 2而部分逆转(图3H,I)。这些发现共同表明,靶向LSD1通过激活Hippo通路调节YAP表达和黑色素瘤细胞迁移,从而抑制黑色素瘤细胞迁移。

4)靶向LSD1可促进LATS1/2转录激活
以上结果表明,Hippo通路是LSD1调控YAP表达和黑色素瘤细胞迁移的关键机制。鉴于LSD1的抑制显著提高了LATS1和LATS2的蛋白水平(图3E, F),我们进一步研究了LSD1对LATS1和LATS2表达的调控作用。如图4A、B所示,在B16和A875细胞中,敲低LSD1可显著提高LATS1蛋白水平,但不改变其半衰期。qRT-PCR分析显示,LSD1抑制或敲低后,LATS1/2 mRNA水平上调(图4C,D),表明LSD1抑制促进了LATS1和LATS2的转录激活。这些结果共同表明LSD1在转录水平上调控LATS1的表达。我们通过ChIP-qPCR验证了LSD1对LATS1和LATS2的表观遗传调控。在LATS1和LATS2基因转录起始位点周围设计引物,长度从−1000到+400 bp不等(图4E,F)。首先,使用LSD1特异性抗体的ChIP-qPCR证实LSD1直接结合LATS1和LATS2的启动子区域。值得注意的是,与对照组相比,ORY‑1001治疗显著降低了这些启动子处LSD1的富集(图4G)。我们使用H3K4me2特异性抗体进行ChIP-qPCR实验,以确定LSD1是否直接影响LATS1/2启动子区域的H3K4me2水平。如图4H,I所示,与对照组相比,经LSD1抑制剂处理的细胞LATS1启动子区域(-473 bp, -122 bp)和LATS2启动子区域(-878 bp, -534 bp)的DNA富集显著增加。这些结果表明,LSD1抑制促进了LATS1/2启动子区域H3K4me2的修饰,导致其转录激活。

5)LSD1通过上调NF2表达调控Hippo通路
据报道,由肿瘤抑制基因NF2编码的NF2蛋白是Hippo通路的上游激活因子。因此,我们探讨NF2是否在LSD1调控Hippo-YAP通路中发挥作用。不同浓度的ORY-1001处理A375、A875和B16细胞,检测NF2蛋白水平。结果表明,ORY-1001以浓度依赖性的方式增加NF2蛋白的表达(图5A)。同样,LSD1的敲低也上调NF2蛋白的表达(图5B)。相反,虽然敲除NF2增加了YAP的表达,但不影响LSD1的表达水平(图5C)。这些结果表明,黑色素瘤细胞中LSD1的表达不受NF2的调节。为了进一步探索NF2在激活LSD1抑制剂介导的Hippo通路中的作用,我们用siNF2转染B16和A875细胞,检测Hippo通路相关蛋白的变化。结果显示,ORY-1001显著激活Hippo通路,p-LATS蛋白表达上调,YAP蛋白表达下调(图5D)。然而,NF2的敲低抑制了Hippo通路的激活,并显著逆转了ORY-1001对Hippo通路和YAP表达的影响(图5D)。这些结果表明LSD1抑制剂通过激活Hippo通路和NF2抑制YAP表达。接下来,我们探讨了siNF2对LSD1调控EMT相关标志物的影响。如图5E所示,与对照组相比,NF2的敲低导致N-cadherin、Vimentin、Snail和Slug的上调,并逆转了ORY-1001对黑色素瘤细胞中这些EMT标记物的抑制作用。然后,我们使用伤口愈合实验和transwell细胞迁移实验来评估细胞迁移能力。结果显示,NF2的下调显著促进了细胞迁移,抵消了LSD1抑制剂对黑色素瘤迁移的抑制作用(图5F,G)。以上结果表明,ORY-1001通过上调NF2表达调控Hippo通路,从而抑制YAP表达,抑制黑色素瘤细胞迁移。

6)靶向LSD1可促进NF2转录激活
随后,我们利用蛋白合成抑制剂CHX探讨了LSD1对Merlin的调控作用。如图6A,B所示,敲低LSD1可显著提高Merlin蛋白水平,但不改变其半衰期。我们还观察到,在LSD1抑制或敲低后,Merlin的mRNA水平增加(图6C,D)。这些结果表明LSD1抑制在转录水平上促进了Merlin的表达。为了确认LSD1是否直接结合NF2的启动子区域并调节H3K4me2的水平,我们分别用LSD1抗体和H3K4me2抗体进行了ChIP实验。引物设计在NF2基因转录起始位点−1000 ~ + 400bp的区域(图6E)。使用LSD1特异性抗体的ChIP-qPCR实验表明,ORY- 1001抑制LSD1与LATS1/2启动子区域的结合(图6F)。使用H3K4me2特异性抗体的ChIP-qPCR实验显示,与对照组相比,使用LSD1抑制剂处理的细胞中NF2启动子区域(- 820 bp, - 683 bp)和(- 520 bp, - 382 bp)的DNA富集显著增加(图6G)。这些结果表明,LSD1抑制促进NF2启动子区域的H3K4me2修饰,导致其转录激活。

7)体内LSD1通过NF2-Hippo-YAP轴调控黑色素瘤转移
在体外证实了siNF2、siLATS1和YAP的过表达促进黑色素瘤细胞的迁移并逆转了ORY- 1001的抑制作用后,我们试图在体内验证这些发现。利用NF2敲除(KO NF2)和YAP过表达(OE YAP)的B16细胞建立肺转移模型。如图7A所示,与载药组相比,ORY- 1001显著抑制了黑素细胞的肺转移。然而,在注射过表达YAP或缺乏NF2的细胞的小鼠中,黑色素瘤细胞的肺转移显著增强,这些操作明显逆转了ORY‑1001对肺转移的抑制作用。以上结果表明,ORY-1001在体内抑制黑色素瘤肺转移,为探讨LSD1和YAP在黑色素瘤患者中的临床意义,采用免疫组化方法检测黑色素瘤患者中LSD1和YAP的表达。如图7B、C所示,结果显示原发性和转移性黑色素瘤患者样本中YAP与LSD1蛋白水平呈正相关。YAP和LSD1水平呈正相关(图7D)。有趣的是,在TCGA的一个独立临床样本组中,KDM1A和YAP之间的关联也得到了证实。如图7E所示,在167例转移性黑色素瘤患者的肿瘤组织中,KDM1A与YAP呈正相关。然而,在局限性和复发性黑色素瘤患者的肿瘤组织中,KDM1A和YAP的表达不相关。这些发现共同支持LSD1通过NF2-Hippo-YAP轴调控黑色素瘤转移。

结论:
本研究首次证实LSD1通过NF2-Hippo-YAP信号通路调控黑色素瘤细胞迁移和转移。LSD1抑制上调NF2和LATS1/2激活Hippo通路,导致YAP磷酸化和降解,最终抑制黑色素瘤细胞迁移和转移。这些发现不仅加深了我们对黑色素瘤转移的分子机制的认识,也为开发LSD1抑制剂和黑色素瘤靶向治疗提供了新的理论基础。
参考文献:
Yang H, Ding Y, Wang Y, Wei S, Cao W, Xu Y, He P, Chang L. Targeting lysine-specific demethylase 1 inhibits melanoma metastasis via the NF2-Hippo-YAP pathway. Cell Death Dis. 2026 May 16;17(1):626. doi: 10.1038/s41419-026-08872-1.